加醇沉淀

用醇沉淀的目的是使核酸從裂解體系中沉淀下來，從而實現(xiàn)核酸與其它雜質(zhì)–主要是鹽的分離。就核酸而言，標準的醇沉淀要求有一定的鹽及某一比例的醇用量，但這決不是說這些鹽是必不可少的或者醇的比例是不可更改的。實際操作中不難發(fā)現(xiàn)，當裂解體系中核酸的濃度達到一定水平后，單獨使用醇也可以使核酸沉淀下來；或者含有鹽，使用低比例的醇也可以使核酸沉淀下來，這樣的話，得率可能會降低。當碰到問題，判斷其主要是純度原因時，有效可以通過調(diào)整沉淀條件來改善。
 

洗滌

洗滌原理與目的： 洗滌是非常重要的，首先一定要將沉淀懸浮起來；第二就是要控制一定的時間，尤其是當核酸沉淀比較大時；第三是少量多次；第四則是去上清要有效。對于質(zhì)量好的離心管，上清可以去除得非常有效，否則其殘留量多到會影響后續(xù)的實驗?？梢酝ㄟ^倒掉液體后再短暫離心，將殘液用移液器吸出。

由于殘液中都含有上一步操作中的雜質(zhì)，其殘留量與混勻程度、核酸沉淀的大小都有關。揮發(fā)時去掉的是乙醇，雜質(zhì)是不會被揮發(fā)去除的。另外，核酸沉淀的大小及裂解液的裂解能力也決定了洗滌的強度。沉淀越大，裂解液的裂解能力越強，洗滌越要有效：放置時間相對要長一點，洗滌次數(shù)也要考慮增加。當然，乙醇濃度的選擇也非常重要，一般情況，洗滌要用室溫的 75% 乙醇。

核酸溶解與保存

       核酸溶解： DNA 溶解方法多提倡使用 TE 溶解，其中原因是有人認為 EDTA 可以減少 DNA 被可能殘留下來的 DNase 降解的風險。如果操作過程控制得當，DNase 的殘留幾乎是可以忽略的，有效可以直接使用 Tris 或者水 (pH 接近 7) 溶解 DNA。

核酸保存：基本上，核酸在保存中的穩(wěn)定性，與溫度成反比，與濃度成正比。一般在-20℃保存。如果溫度不合適，核酸發(fā)生降解或者消失，首要原因是酶殘留導致的酶解，第二個原因則是保存核酸溶液的 pH 值不合適導致的水解 ，RNA 在弱酸性更穩(wěn)定，而 DNA 在弱堿性更合適。
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